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  • CÓDIGO
  • PG-1003
  • PG-1004
  • PG-1009
  • PG-1010
  • BG-1010
  • CP-1000
  • DE-1010
  • DESCRIPCIÓN
  • Tiras de Acetato de Celulosa
  • Tiras de Acetato de Celulosa
  • Tiras de Acetato de Celulosa
  • Tiras de Acetato de Celulosa
  • Buffer Barbital Veronal
  • Colorante Amido Black
  • Decolorante Progel
  • UNIDADES
  • 1O tiras
  • 25 tiras
  • 1O tiras
  • 25 tiras
  • 1 litro
  • 1 litro
  • 1 litro
  • CM
  • 2,5x17 cm.
  • 2,5x17 cm.
  • 5,7x14 cm.
  • 5,7x14 cm.
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Procedimiento
Reactivos y material necesarios

• Progel. Tiras de acetato de celulosa gelificado-Ver presentaciones
• Buffer Barbital (Veronal) BG 1000/1010-BG 1000/1010
• Solución Colorante Amido Black CP 1000
• Solución Decolorante DE 1000/1010
• Fuente y Cuba electroforesis
• Aplicador de muestra
• PROSOFT. Software cuantificar las fracciones empleando escáner común y tiras no transparentadas.

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PROCEDIMIENTO

Paso 1

• Abrir el sobre, retirar las tiras necesarias, conservar el resto en su sobre original o recipiente cerrado con una concentración de Metanol entre 20 y 40%.

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PROCEDIMIENTO

Paso 2

• Previo a su utilización, equilibrar en buffer Barbital nuevo10-20 minutos. No emplear la cuba de electroforesis ni el buffer de corrida para incubar, ya que el metanol absorbido en las tiras, altera el pH y fuerza iónica del buffer de corrida y restos de acetato pueden adherirse a los electrodos.

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PROCEDIMIENTO

Paso 3

Secar cada tira, individualmente (rollo absorbente de papel de cocina es aceptable). La formulación de PROGEL permite mantener las tiras en contacto con el aire por periodos superiores a 15 minutos sin que sufran deterioro alguno. Esto da mayor margen de maniobra al operador durante el procedimiento

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PROCEDIMIENTO

Paso 4

Aplicar las muestras de acuerdo a las instrucciones de uso de su sembrador. La tira debe usarse con el lado opaco hacia arriba (el extremo cortado, abajo a la derecha).
Muestra: suero (no emplear plasma). En el caso de utilizar otras muestras biológicas, clarificar previamente por centrifugación. De ser necesario concentrar (el límite de sensibilidad del método es 0,03 mg/dl).
La utilización de materiales biológicos distintos a suero humano, debe ser validada por el profesional responsable.

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PROCEDIMIENTO

Paso 5

Agregar el buffer Barbital hasta el nivel indicado en la cuba de electroforesis.

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PROCEDIMIENTO

Paso 6

De ser posible, inclinar, como muestra la figura, para equilibrar el volumen de líquido en ambos lados de la misma.

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PROCEDIMIENTO

Paso 7

Colocar las tiras en la cuba formando un “puente” simétrico entre ánodo y cátodo, de manera que los extremos sumergidos en el buffer tengan aproximadamente la misma longitud. Tapar y correr inmediatamente para evitar la difusión de la muestra.

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PROCEDIMIENTO

Paso 9

Colorear por espacio de 5 a 30 segundos en colorante Amido Black- Amido Black CP 1000. Este colorante ha sido formulado específicamente para PROGEL:
-Permite periodos de coloración cortos.
-Disminuye la coloración inespecífica y la precipitación de proteínas entre las fracciones lo que permite obtener una mayor resolución y separación clara de alfa1/alfa2 y beta1/beta2
-Decoloración más rápida.
Al efectuar la coloración, se recomienda sostener las tiras manualmente para evitar la tinción de los extremos y disminuir así la cantidad de colorante retenido.

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PROCEDIMIENTO

Paso 8

Antes de continuar con el siguiente paso, asegúrese de conocer el funcionamiento de la fuente de poder y cuba. Bajo ninguna circunstancia toque ni abra la cuba mientras está conectada a la red eléctrica. Luego de finalizada la corrida y desconectada fuente de poder, se recomienda esperar un par de minutos para permitir la disipación de eventual corriente estática
Correr bajo un amperaje constante de 3 mA por cada tira de 2,5x17 cm o proporcionalmente para tiras mas anchas.
Aplicar un Voltaje constante de entre 150 V/ 30ª 60 minutos hasta 200 V /22 minutos (1-1,5 mA/cm). Es decir, aproximadamente 3-4 mA por cada tira de 2,5*17).
Cada laboratorio debe determinar las condiciones óptimas de corrida de acuerdo a su equipamiento (fuentes, cuba, electrodos, etc.).
Se recomienda no reutilizar el Buffer, pero en caso de hacerlo mezclar previamente los depósitos aniónico y catiónico, ya que el pH de cada uno será diferente luego de la corrida.

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PROCEDIMIENTO

Paso 11

Evaluación:
La inspección visual de la tira, es el paso más importante en la evaluación de una proteinograma electroforético
El escaneo posterior cuantifica, pero no reemplaza al ojo del profesional experimentado.

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PROCEDIMIENTO

Paso 10

Decoloración: enjuagar una vez con decolorante usado y varias veces con sucesivos cambios solución decolorante nueva (es preferible efectuar varios cambios de volúmenes pequeños a pocos cambios de grandes volúmenes).
De ser posible agitar en forma permanente.

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PROCEDIMIENTO

Paso 12

Cuantificación. Nuestra Empresa ha desarrollado PROSOFT un software de digitalización y procesamiento de imágenes, que permite analizar, modificar y cuantificar los resultados, empleando un simple escáner comercial y tiras sin transparentizar. Consulte por la versión beta del mismo

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